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ChemoMetec et Sartorius Stedim Biotech lancent le NucleoCounter® NC-3000™ Article du 13/05/11

"OZ Biosciences : Une expertise recherchée dans la transfection de Biomolécules, une réponse pour les clients exigeants !" Article du 24/03/10


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Les services proposés par IbioExperts :

Formations scientifiques


iBioexperts,  est enregistré comme centre de formation sous le numéro 93 13 13232 13 auprès du préfet de  région Provence-Alpes-Côte d’Azur. Cet enregistrement ne vaut pas agrément de l'Etat.

 

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Biochimie - 1

 

Électrophorèse SDS-PAGE/Western Blot (WB)

Principes généraux et applications


Résumé du thème de la formation:

La technique de western blot est une technique de biochimie qui permet de détecter pour une protéine : sa présence, sa taille et sa concentration (stable ou variable) ainsi que de faire une comparaison de cette concentration pour des groupes différents (par exemple, entre des individus « sains » et d’autres atteints d’une pathologie) dans le but d’une expérimentation scientifique.

Objectif : Etre capable de comprendre l’utilisation de cette technique afin de la maîtriser au niveau de la recherche scientifique.

29 Mars; 06 Octobre 2011

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Biochimie - 2


L’électrophorèse bidimensionnelle, son utilisation en Protéomique


Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

L’électrophorèse bidimensionnelle est une technique de biochimie qui représente la première étape de la protéomique. Elle permet l’étude des protéomes totaux extraits d’un tissu, de cellules ou de bactéries (taille, pH, modifications post-traductionnelles). Cette approche permet de réaliser une cartographie des protéines mais également une comparaison différentielles de ces protéines dans le cadre de certaines études de recherche scientifique clinique.

Objectif : Etre capable de comprendre le principe de la protéomique et de l’intérêt de son utilisation au niveau de la recherche scientifique.

12 et 13 Avril; 13 et 14 Septembre 2011

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Biochimie - 3

 

Production de protéine dans des cellules animales: système eucaryote


Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

L’utilisation des cellules pour la production de protéine est utilisée lorsque la protéine à produire subit des modifications post-traductionnelles qui ne peuvent se produire lorsque l’on utilise la culture de bactéries. Elle va permettre de produire une protéine recombinante la plus proche possible de la protéine humaine.

Objectif : Etre capable de comprendre l’intérêt de l’utilisation de cette technique pour la production d’une protéine à étudier au niveau de la recherche scientifique.

22 Mars; 28 Juin; 11 Octobre 2011

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Biochimie - 4

 

Production de protéines dans des systèmes procaryotes


Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

Les systèmes procaryotes sont utilisés pour la production de protéines recombinantes dans le but d’en obtenir des quantités plus importantes que dans les systèmes eucaryotes. Ils permettent une application plus industrielle de la production d’une protéine recombinante « pure ».

Objectif : Etre capable de comprendre l’intérêt de l’utilisation de cette technique pour la production d’une protéine à étudier au niveau de la recherche scientifique.

23 Mars; 29 Juin; 12 Octobre 2011

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Biologie Moléculaire - 1

 

Utilisation du Génotypage


Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

Le génotypage est une technique de biologie moléculaire qui permet en utilisant la PCR de rechercher la présence d’un gène ou d’une variation génétique sur le génome.

Objectif : Etre capable de comprendre comment utiliser la technique de génotypage dans le but d’une expérimentation scientifique.

21 Avril ; 30 Juin; 13 Octobre 2011

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Biologie Moléculaire - 2

 

Hybridation in situ


Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

La technique d’hybridation in situ est une technique de biologie moléculaire qui permet de localiser, sur une coupe histologique de tissus, une séquence nucléotidique (ADN, ARN) en utilisant des différentes sondes (ADN, ARNm ou oligonucléotides synthétiques) dans le but d’une expérimentation scientifique fondamentale ou associée à la recherche clinique.

Objectif : Etre capable de comprendre les principes de base de l’hybridation in situ afin de pouvoir l’utiliser pour un projet de recherche scientifique.

03 et 04 Mai; 15 et 16 Septembre; 22 et 23 Novembre 2011

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Biologie Moléculaire - 3

 

Introduction à la génomique


Principes de base et techniques associées

Objectif :

Appréhender la Génomique : des principes de base de la Biologie Moléculaire, aux techniques utilisées en laboratoires. Au final, les participants seront capable de comprendre l’utilité de chacune des techniques, leurs principes et leurs applications en laboratoire

17 et 18 Mai; 03 et 04 Octobre; 01 et 02 Décembre 2011

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Biologie Moléculaire - 4

 

Analyse moléculaire multiparamétrique

 

Description et Applications

Objectif :

Introduction aux techniques d’analyse moléculaire multiparamétrique et leurs implications en Biologie médicale.

14 Juin; 15 Novembre 2011

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Histologie

 

Analyse histologique

Analyse histologique

Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

L’utilisation des techniques d’histologie permet de réaliser une étude au niveau des tissus de l’expression et de la localisation d’une protéine d’intérêt, ou des modifications (d’expression, de localisation etc…) dues à une pathologie dans le cadre d’une expérimentation scientifique.

Objectif : Etre capable d’utiliser les techniques d’histologie selon les besoins de l’expérimentation afin de les maîtriser au niveau de la recherche scientifique.

19 et 20 Mai; 27 et 28 Septembre 2011

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Biologie cellulaire - 1

 

Culture Cellulaire: Utilisation de lignées cellulaires et établissement de culture primaire

                              

Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

La culture cellulaire est un moyen technique utilisé afin de faire croître des cellules hors de leur organisme. L’utilisation de cellules en culture, va permettre de reproduire des conditions conduisant à une pathologie, de tester des molécules sur leur survie ou de les utiliser afin de produire des protéines.

Objectif : Etre capable de comprendre l’utilisation de la culture cellulaire (lignées cellulaires ou culture primaire de cellules) afin de maîtriser son utilisation au niveau de la recherche scientifique.

15 Juin; 29 Septembre; 13 Décembre 2011

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Biologie cellulaire - 2

 

Les cellules souches Hématopoîétiques (CSH)

Connaissances actuelles et utilisations en Biothérapies

Objectif : Etre capable de comprendre le principe de fonctionnement de la cellule souche et de bien maitriser son utilisation aussi bien au niveau de la recherche scientifique qu'en pratique médicale.

24 et 25 Juin, 04 et 05 Octobre 2010

Marseille

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Protéomique - 1

 

Introduction à la Protéomique


Principes de base et techniques associées

Objectif :

Appréhender la Protéomique : des principes de base, aux techniques utilisées en laboratoires.

Au final, la personne formée. devra être capable de comprendre l’utilité de chacune des techniques, leurs principes et leurs applications dans leur laboratoire.

26 Avril; 16 Juin; 16 Novembre 2010

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Immunologie - 1

 

Technique d'Immunomarquage: DOSAGE ELISA

Principes généraux et applications

Utilisation de kits industriels et mise au point du dosage en fonction d'un antigène d'interêt.

Résumé du thème de la formation:

Le dosage ELISA (Enzyme Linked ImmunoSorbent Assay) est une technique d'immunologie qui permet de détecter, dans un échantillon biologique, la présence d’un antigène spécifique et peut être utilisé comme un « test diagnostic » dans le but d’une expérimentation scientifique.

Objectif : Etre capable de mettre au point et de comprendre l’utilisation du dosage ELISA afin de le maîtriser au niveau de la recherche scientifique.

17 et 18 Juin; 20 et 21 Septembre; 06 et 07 Décembre 2010

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Immunologie - 2

 

Marquage en ImmunoFluorescence et Microscopie confocale


Principes généraux et applications

Résumé du thème de la formation:

L’immunofluorescence est un moyen technique qui permet de révéler la localisation d’une protéine, grâce à l’utilisation d’anticorps spécifiques, dans ces cellules in situ (immunocytochimie) ou de coupes de tissus (immunohistochimie) dans le but d’une expérimentation scientifique.

Objectif : Etre capable de comprendre l’utilisation de l’immunofluorescence afin de la maîtriser au niveau de la recherche scientifique.

21, 22 et 23 Juin, 14, 15 et 16 Décembre 2010

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Bioinformatique -1

 

Introduction à l'utilisation du logiciel Vector NTI®:


Gestion et analyses de molécules biologiques (ADN ou protéines)

Objectif : Cette formation a pour objectif de répondre aux besoins en bioinformatique et en particulier dans l’analyse et la gestion d’information de molécules biologiques de type ADN ou protéines grâce à l’utilisation du logiciel Vector NTI®.

27 Avril, 07 Juin, 22 Septembre 2010

Paris/Marseille/Lyon

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Bioinformatique -2


Maitrise du logiciel Vector NTI®:


Gestion et analyses de molécules biologiques (ADN ou protéines)

Objectif : Cette formation a pour objectif de répondre aux besoins en bioinformatique et en particulier dans l’analyse et la gestion d’information de molécules biologiques de type ADN ou protéines grâce à l’utilisation du logiciel Vector NTI®.

L’objectif principal est d’approfondir les différents aspects d’analyse et de gestion de données proposés par le logiciel Vector NTI. Le stage permettra aux participants possédant des connaissances de bases du logiciel, d’acquérir une maitrise des principales fonctions du logiciel, tels que, gérer des bases d’oligonucléotides, de générer des cartes de restrictions, effectuer des alignements multiples d’ADN ou de protéines, ou gérer des projets de séquençage à partir des traces de sortie de séquenceur.

08 et 09 Juin, 17 et 18 Novembre 2010

Paris/Marseille/Lyon

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Bioinformatique -3


Introduction à l'analyse des données d'expression issues des puces à ADN


Principes généraux et applications courantes

Objectif : Etre capable de comprendre les principes de base de la biotechnologie des puces à ADN, sont interêt et ses applications usuelles dans l'étude de l'expression des gènes.

 

14 Avril, 01 Juillet, 19 Novembre 2010

Paris/Marseille/Lyon

 

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Bioinformatique -4

Introduction à l’utilisation du logiciel Bioperl ®:


Gestion et analyses de molécules biologiques (ADN ou protéines)

Objectif : Acquérir les compétences nécessaires à la manipulation et à l'analyse bioinformatique de séquences (nucléiques et protéiques) en utilisant des outils disponibles sur le web (banques de données, navigateur de génomes, outils de recherche de similarité, de recherche de motifs;...). Acquérir les compétences nécessaires à l'utilisation des banques de données d expressions

22 Avril, 10 Juin, 19 Octobre 2010

Paris/Marseille/Lyon

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Bioinformatique -5


Maitrise du logiciel Bioperl ®:


Gestion et analyses de molécules biologiques (ADN ou protéines)

Objectif : Approfondir des connaissances de programmation Conceptions d’outils à utilisation standard  dans le traitement  et l’extraction des données biologiques  génomiques et transcriptomiques

06 et 07 Mai, 20 et 21 Octobre 2010

Paris/Marseille/Lyon

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Cytométrie en flux -1

 

  Introduction à la cytométrie en flux

Principes généraux et applications courantes

Objectif : Etre capable de comprendre les principes de base de la cytométrie en flux, son intérêt et ses applications usuelles en Biologie.

 

30 Mars, 11 Juin, 14 Octobre 2010

Paris/Marseille/Lyon

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Cytométrie en flux -2



Cytométrie en flux multicouleurs


Des outils à la mise en place d'applications

Objectif : Présenter les aspects techniques, et méthodologiques dans le but d’acquérir une bonne compréhension des applications « multicouleurs »

 

01 et 02 Juin, 25 et 26 Octobre 2010

Paris/Marseille/Lyon

 

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Cytométrie en flux -3

 


Analyse de données de cytométrie à l'aide  du logiciel FlowJo ®


Initiation à l'utilisation du logiciel flowJo ®

Objectif : Savoir utiliser et analyser des données de cytométrie avec le logiciel. Connaitre les principales fonctions du logiciel et être capable de réaliser une analyse simple.

31 Mai, 15 Octobre 2010 

Paris/Marseille/Lyon

 

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Cytométrie en flux -4

 

Analyse des microorganismes au laboratoire et dans l'environnement par cytométrie en flux



Intérêts de cette nouvelle approche d'étude des microorganismes

Objectif : Etre capable de comprendre les principes de base de la cytométrie en flux, son intérêt et ses applications en microbiologie.

08 Septembre2010 - Renseignez vous.

Marseille

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Cytométrie en flux -5


Standardisation et contrôles qualité en cytométrie en flux

Bonnes pratiques de la cytométrie en flux et mise en place de procédures de suivi de l'instrumentation et de protocoles de standardisation.

Objectif : Présenter l’intérêt, et les aspects méthodologiques de la standardisation en cytométrie en flux et la mise en place de contrôles qualité.

03 et 04 Juin, 09 et 10 Septembre 2010

Paris/Marseille/Lyon

 

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Gestion du laboratoire -1

 

Gestion informatisée du laboratoire: les LIMS


Principes généraux

Objectif : Etre capable de comprendre les principes de base du fonctionnement d’un LIMS et ses principales fonctionnalités. Appréhender facilement un projet d’acquisition et les principales étapes indispensables.

 

08 et 09 Mars ; 08 et 09 Juin; 07 et 08 Octobre 2010

Paris/Marseille/Lyon

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Gestion du laboratoire -2

 

Les Bonnes Pratiques de Laboratoire (BPL)

 


Les niveaux de traçabilité indispensables

Objectif : Etre capable de comprendre les principes de l’Assurance Qualité dans les laboratoires. Appréhender les règles d’une Assurance Qualité pratique et applicable.


28 Janvier ; 28 Mai; 28 Septembre 2010

Paris/Marseille/Lyon

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Gestion du laboratoire -3

 

Introduction à la réglementation REACH (Registration, Evaluation & Autorisation of Chemicals)


Les risques liés aux substances chimiques

Description de la formation :

L'un des objectifs de la réglementation REACH est d'améliorer la connaissance des propriétés environnementales et sanitaires des substances chimiques existantes et de leurs usages en intégrant d'ici à 2012 les substances existantes et nouvelles dans un même système. Ce projet prévoit que l'ensemble des substances existantes produites ou commercialisées au dessus d'une tonne/an dans l'Union Européenne, soit 30 000 substances, soit soumis à une procédure d'enregistrement, d'évaluation et d'autorisation appelé REACH. Cette formation couvre les aspects liés aux exigences requises par le système REACH, notamment en matières d'essais, en fonction des propriétés dangereuses avérées ou présumées des substances chimiques, des utilisations, de l'exposition et des quantités produites ou importées.

 

Objectif :

Etre capable de comprendre les objectifs et leur mise en application.

Application quelque soit la dangerosité des produits : la traçabilité nécessaire et comment la mettre en œuvre.

21 Mai, 22 Octobre 2010

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Gestion du laboratoire -4

 

Validation de systèmes informatisés


Les Principales étapes et les contraintes réglementaires

Description de la formation :

Mise en oeuvre d'une méthodologie réutilisable s’appuyant sur l’analyse des risques réglementaires, fonctionnels et informatiques.

Objectif : Etre capable de comprendre les principes de base de la validation. Pouvoir les mettre en application dans le cadre d’un projet.

03 et 04 Mai, 27 et 28 Octobre 2010

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Production -1

 

Maintenance préventive conditionelle en milieu industriel


L’intérêt d’effectuer le suivi des machines de production

Objectif :

Etre capable de comprendre les principes de la maintenance prédictive.

Appréhender le principe de la lubrification et les différentes méthodes de monitoring.

28 et 29 Avril, 23 et 24 Septembre 2010

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